Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备酶试剂盒Takara Clontech

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Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
品牌 Code No. 产品名称 包装量 价格(元) 说明书 数量
Clontech 632612 Guide-it CRISPR/Cas9 Vector System 1 System ¥4,641 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
Clontech 632613 Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Production System 1 System ¥9,225 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
Clontech 632616 Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Packaging Set 10 Rxns ¥7,076 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
Clontech 632617 Gesicle Producer 293T Cell Line 1 ml ¥7,650 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备 Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
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Guide-itCRISPR/Cas9 Gesicle Production System
· 细胞来源的纳米囊泡(Gesicle),可用于直接导入Cas9-sgRNA
· 转染效率低的哺乳动物细胞(分裂細胞、非分裂細胞、iPS細胞)也可实现有效的基因编辑
· Cas9蛋白质/sgRNA复合物可以快速从细胞内消除,降低脱靶效应
 
■ 产品说明:
Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Production System用于制备Cas9/sgRNA Gesicle,Cas9/sgRNA Gesicle是可以将Cas9蛋白质/sgRNA复合物导入到哺乳动物细胞的细胞来源的纳米囊泡(Gesicle)。与采用质粒或者病毒载体相比较,采用Cas9/sgRNA Gesicle进行基因编辑实验,可以实现在广泛细胞类型中高效导入Cas9蛋白质/sgRNA复合物,从而提高基因编辑效率。同时,可以严格控制用于细胞的Cas9蛋白质/sgRNA复合物的剂量和持续时间,从而降低脱靶效应。
 
■ CRISPR/Cas9 Gesicle特点:
· 适用于多种细胞类型
   可在分裂细胞、非分裂细胞、原代细胞、细胞株、iPS细胞等多种细胞类型中进行基因编辑(图4)
· 高活性Cas9蛋白质/sgRNA确保有效的细胞导入
   Cas9蛋白质/sgRNA直接导入细胞,无需转录和翻译过程,导入后可以直接开始基因编辑
· 实现在需要的时候进行基因编辑
   可以严格控制Cas9蛋白质/sgRNA复合物的剂量和持续时间,与采用质粒或者病毒载体导入系统进行
   基因编辑相比较,降低了脱靶效应
 
■ CRISPR/Cas9 Gesicle原理:
Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
图1. Cas9/sgRNA Gesicle制备和靶细胞导入
 
(Step 1) 将诱导Gesicle形成的质粒预混液,靶特异sgRNA表达载体和Cas9表达载体共转染至Gesicle Producer 293T Cell Line (Code No. 632617)中。(Step 2) 利用Clontech iDimerize系统技术原理,借助与gesicle表面的膜结合红色荧光蛋白质CherryPicker之间的相互作用, iDimerize诱导配体将Cas9-sgRNA核糖核蛋白复合物载入到gesicle中。(Step 3) 携带红色荧光标记的Gesicle装配完成并从制备细胞中释放出来,收集培养基上清液,获得Cas9-sgRNA Gesicle浓缩储液。(Step 4) 收集获得的Gesicle适用于广泛细胞类型,可将靶细胞瞬时标记为红色并将Cas9-sgRNA复合物释放至靶细胞中。由于Cas9蛋白质C端有核定位信号(NLS),同时靶细胞培养液中没有dimerizer诱导配体,因此可以确保Cas9-sgRNA复合物与红色荧光蛋白质分离之后可以转运至细胞核内。
 
Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
图2.Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Production System实验流程
 
■ 实验例
Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
图3. 脱靶效应比较
 
比较采用Cas9-sgRNA Gesicle和质粒系统导入sgRNA所带来的脱靶效应。凝胶电泳结果、Guide-it Mutation Detection Kit检测结果以及测序结果均表明,采用Cas9-sgRNA Gesicle导入sgRNA时在潜在脱靶位点检测不到明显的脱靶效应,而采用质粒系统导入sgRNA时在靶基因位点EMX1和潜在脱靶位点均可检测到基因突变。
 
Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
图4. 不同细胞类型中基因敲除效率比较
 
建立整合ZsGreen1表达框的不同细胞系,采用Cas9-sgRNA Gesicle(sgRNA以ZsGreen1为靶基因)处理细胞系,流式细胞仪进行结果分析。以添加不同量的ZsGreen1为靶基因的Cas9-sgRNA Gesicle(添加量分别为10 μl、20 μl、30 μl)处理组为实验组、以转染Cas9/sgRNA表达质粒处理组作为对照组,流式细胞仪检测基因敲除效率。
在Jurkat等难转染细胞类型中,Cas9-sgRNA Gesicle的Cas9-sgRNA导入效率和ZsGreen1基因敲除效率要优于Cas9/sgRNA表达质粒。
 
Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
图5.成功敲除hiPS细胞中的CD81基因
 
以人CD81为靶标设计sgRNA,采用Gesicle Producer 293T Cell Line制备产生含有Cas9-sgRNA复合物的细胞纳米囊泡,收集Cas9-sgRNA Gesicle并将其添加至48孔板培养的未分化Cellartis human iPS cell line 18(Code No. Y00305)。Cellartis human iPS cell line 18以Cellartis DEF-CS Culture System(Code No. Y30010)为培养体系,培养6 hr和24 hr后更换为不含有Gesicle的DEF-CS培养基继续培养7天。未添加Gesicle处理并且采用相同培养条件培养的Cellartis human iPS cell line 18作为实验对照组。通过流式细胞仪检测经Gesicle处理和未经Gesicle处理的Cellartis human iPS cell line 18, 采用FITC标记的CD81抗体检测细胞表面CD81的表达情况。
Panel A. 未经处理的Cellartis human iPS cell line 18(左)和FITC标记的CD81抗体检测未经Gesicle处理的Cellartis human iPS cell line 18(右)。 Panel B. FITC标记的CD81抗体检测经Gesicle处理6 hr(左)和24 hr(右)的Cellartis human iPS cell line 18。
流式细胞仪检测结果表明, 经Cas9/sgRNA Gesicle处理6 hr 后,CD81基因敲除效率为43%;经Cas9/sgRNA Gesicle处理24 hr 后,CD81基因敲除效率为49%。
 
■ 产品组份
Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Production System(Code No. 632613)
1. Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Packaging Set( Code No. 632616)
Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Packaging Mix 1 (green cap) 10 vials
Guide-it CRISPR/Cas9 Gesicle Packaging Mix 2 (yellow cap) 10 vials
A/C Heterodimerizer (500 nM in Ethanol) 50 μl
Protamine Sulfate (4 mg/ml) 200 μl
 
2. pGuide-it-sgRNA1 Vector System( Code No. 632612)
a.pGuide-it-sgRNA1 Vector (Linear) (7.5 ng/μl) 20 μl
b.Guide-it Ligation Components v2  
    DNA Ligation Mighty Mix 50 μl
    Guide-it Oligo Annealing Buffer 1.5 ml
    Guide-it Control Annealed Oligos v2 (100 fmol/μl) 10 μl
    Guide-it Sequencing Primer 1 (100 pmol/μl) 10 μl
    PCR-Grade Water 1 ml
c.Stellar Competent Cells( Code No. 636763)  
    Stellar Competent Cells (100 μl/tube) 10 tubes
    SOC Medium (1 ml/tube) 10 tubes
    pUC19 Vector (0.1 ng/μl) 10 μl
 
Gesicle Producer 293T Cell Line(Code No. 632617)
Gesicle Producer 293T Cell Line 1 ml
 
■ 保存
Stellar Competent Cells:-80℃
其它:-20℃

Gesicle Producer 293T Cell Line :液氮保存
· 收到产品后,立即将其保存在液氮中。
· 在液氮保存的情况下,立即复苏细胞进行细胞培养。

 
■ 所需要的其它产品(主要产品)
· 0.45 μm 无菌过滤器(cellulose acetate或者polysulfonate)
· 20 ml 无菌注射器
· 50 ml 离心管 (Corning Falcon Cat. No. 352017等)
· 离心机、摆动转子(50 ml 离心管可以满足8,000X g离心要求)(例如:离心机Beckman J2-HS、摆动转子 JS-7.5 swinging bucket rotor)
· 不含氯化钙和氯化镁的Dulbecco’s PBS(用于细胞培养)(Sigma Cat. No. D8537等)
· 细胞培养液
· 胶原蛋白质预包被培养板
 
产品详情请点击:Cas9-sgRNA细胞纳米囊泡制备
 
 

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CRISPR/Cas9质粒系统酶试剂盒Takara Clontech

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CRISPR/Cas9质粒系统
品牌 Code No. 产品名称 包装量 价格(元) 说明书 数量
Clontech 632601 Guide-it CRISPR/Cas9 System (Green) 1 System ¥4,534 CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统
Clontech 632602 Guide-it CRISPR/Cas9 System (Red) 1 System ¥4,534 CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统
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          CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统
CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统 CRISPR/Cas9质粒系统            
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          CRISPR/Cas9质粒系统        
 
 
注意:购买以上产品,需要填写专利确认书
 
CRISPR/Cas9质粒系统
对于使用CRISPR/Cas9 技术进行哺乳动物基因组编辑来说,Guide-it CRISPR/Cas9 系统是可以用于克隆和表达靶向单链向导RNA (single guide RNAs, sgRNAs)的试剂盒。该系统中的载体同时表达Cas9核酸酶、针对特定位点的sgRNA和明亮的荧光蛋白质。其中两种荧光蛋白质(ZsGreen1 和 tdTomato)可供选择,用于监测转染效率或在后期使用流式细胞仪富集/分选转染细胞时用到。使用该系统构建一个表达特异性序列的sgRNA的质粒非常简单;将用户提供的、与目标序列对应的两条核酸单链退火结合成为双链,再使用系统中包含的高效率连接混合液将双链插入到线性化的质粒中。这个试剂盒同样包括Stellar感受态细胞,确保高效率的转化。
 
产品特点:
· 单质粒载体:特异性靶向sgRNA的表达由人的U6启动子驱动,Cas9核酸酶及明亮的荧光标志(ZsGreen1 或 tdTomato)的表达由一个双向CMV启动子驱动。
· 荧光蛋白质tdTomato和ZsGreen1异常明亮:分别是EGFP亮度的6倍和2.5倍;这些标志物可以被用于监测转染效率、或使用流式细胞仪富集/分选转染细胞。
· 简便地构建质粒:针对您的靶序列设计的特异性寡核苷酸,然后使用试剂盒中提供的高效率混合液和高效的感受态细胞克隆到预先线性化的质粒中。
· 包含足够的试剂:足够用于构建表达10种不同的sgRNA的质粒。
 
产品应用:
使用CRISPR/Cas9技术对哺乳动物进行基因编辑时,靶向单链向导RNA(sgRNA)的克隆和表达。
 
产品组份:
Guide-it CRISPR/Cas9 System (Green) (Code No. 632601)
· pGuide-it-ZsGreen1 Vector (Linear)
· Guide-it Ligation Components
· Stellar Competent Cells

Guide-it CRISPR/Cas9 System (Red) (Code No. 632602)
· pGuide-it-tdTomato Vector (Linear)
· Guide-it Ligation Components
· Stellar Competent Cells

 
实验例:
CRISPR/Cas9质粒系统
分别接种1×105个HEK293、HeLa、U2OS、HT1080细胞至12孔板,培养16 h后,采用Xfect Transfection Reagent转染2.5 μg pGuide-it-ZsGreen1质粒至细胞。pGuide-it-ZsGreen1质粒包含分别以CCR5、C4BPB、EMX1为靶基因设计的sgRNA。
转染48 h后,通过荧光显微镜观察ZsGreen1荧光表达情况(A),通过FACS测定转染效率(B. Transfection%)。
采用Guide-it Mutation Detection Kit测定基因突变导入效率。以细胞为起始直接PCR扩增目的片段,扩增产物经过变性及退火后产生错配位点,之后Guide-it解离酶剪切错配位点。剪切产物经过凝胶电泳后,通过密度分析测定基因突变导入效率(B. Indel%)。
(数据来源于Takara Bio USA, Inc.)
 
 
 
产品详情请点击:CRISPR/Cas9质粒系统
 
 

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CRISPR/Cas9慢病毒系统酶试剂盒Takara Clontech

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CRISPR/Cas9慢病毒系统
品牌 Code No. 产品名称 包装量 价格(元) 说明书 数量
Clontech 632629 Lenti-X CRISPR/ Cas9 System 1 System ¥14,572 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统
Clontech 632630 pLVX-hyg-sgRNA1 Vector System 10 Rxns ¥4,610 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统
Clontech 632631 pLVX-puro-Cas9 Vector 20 μl ¥7,483 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统
Clontech 632633 Lenti-X Tet-On 3G CRISPR/Cas9 System 1 System ¥22,832 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统
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CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统 CRISPR/Cas9慢病毒系统            
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慢病毒介导的CRISPR/Cas9 系统
Lenti-X CRISPR/Cas9 System
Lenti-X CRISPR/Cas9 System是一个完整的由慢病毒介导的CRISPR/Cas9基因编辑系统。该系统包括Lenti-X Packaging Single Shots(用于产生高滴度的病毒)和两个不同的质粒载体(用于在靶细胞中表达Cas9 和客户自定义的sgRNA)。表达sgRNA的质粒系统pLVX-hyg-sgRNA1,易于插入客户自定义的sgRNA 序列,并且该系统提供足够的质粒供客户构建10种不同的sgRNA序列质粒。利用慢病毒导入sgRNA和Cas9基因,可以对难转染细胞系实现靶向基因编辑。
Lenti-X CRISPR/Cas9 System涉及到Cas9在靶细胞中的恒定表达,而Lenti-X Tet-On 3G CRISPR/Cas9 System结合了Tet-On 3G 反式转录激活蛋白,这使得用户可以通过添加强力霉素(doxycycline)来诱导Cas9的表达。通过严格控制Cas9的表达,Lenti-X Tet-On 3G CRISPR/Cas9 System可以使用户在细胞培养中,减少与Cas9稳定表达相关的毒性与脱靶效应。
 
■ 产品特点
· 利用病毒导入Cas9 基因和sgRNA ,使得一些难转染的哺乳动物细胞可以实现基因编辑,包括增殖细胞和非增殖细胞。
· Lenti-X Packaging Single Shots易于产生高滴度病毒。
· 由慢病毒介导客户自定义的sgRNA 和Cas9,用于哺乳动物使用CRISPR/Cas9 技术进行基因编辑。
· 通过严格控制Cas9的表达,Lenti-X Tet-On 3G CRISPR/Cas9 System可以使用户在细胞培养中,减少与Cas9稳定表达相关的毒性与脱靶效应。
 
■ 产品应用
· 利用CRISPR/Cas9技术对哺乳动物基因组编辑时,以慢病毒为基础的、用户自定义sgRNA和 Cas9的导入系统。
 
■ 实验例
CRISPR/Cas9慢病毒系统
 
图1. 诱导敲除HEK293细胞中CD81基因
Tet-On 3G慢病毒转导靶细胞后采用G418筛选阳性单细胞克隆,选取24个单克隆分析荧光素酶报告基因的诱导表达倍数,选择荧光素酶报告基因背景量表达量最低的细胞克隆,然后以Cas9慢病毒(MOI=5)进行转导。转导后的靶细胞以1 μg/ml嘌呤霉素进行筛选,2周后,任意选择6个稳定细胞克隆分析Cas9的诱导表达倍数。将每个单克隆扩增培养的细胞分别接种至两个孔(12孔板)进行培养,其中一孔细胞添加0.5 μg/ml强力霉素诱导培养2天。采用抗Cas9的多克隆抗体(Code No. 632607)和ECL试剂通过Western blot分析Cas9诱导表达情况,抗体稀释比例为1:1,000。从中选取3个Tet-On 3G-Cas9-阳性细胞克隆(C-1, C-2和C-3)进行扩增培养并将其分别接种至2个孔(12孔板)中,CD81-sgRNA慢病毒(MOI=5)再次转导靶细胞,转导8小时后,添加0.5 μg/ml强力霉素至其中一孔进行诱导培养。6天后,收集细胞并采用FITC标记的抗人CD81抗体进行染色,通过FACS检测CD81表达情况。图A. Western blot检测结果显示了在添加0.5 μg/ml强力霉素(+)进行诱导或者不添加强力霉素(-)的情况下,6个分别独立的Tet-On 3G-Cas9-阳性细胞群Cas9蛋白质的表达情况。图B. FACS检测结果显示了CD81-sgRNA慢病毒转导的3个分别独立的Tet-On 3G-Cas9-阳性293T细胞群,在添加0.5 μg/ml强力霉素(+)进行诱导或者不添加强力霉素(-)的情况下,目的基因的敲除效率。在所检测的3个细胞群中,其中2个细胞群C-1和C-2在不添加强力霉素进行诱导的情况下基本不发生基因编辑现象,添加强力霉素进行诱导的情况下CD81基因的敲除效率分别为58.6%和30.7%。而另外一个细胞群C-3在不添加强力霉素进行诱导的情况下仍然会发生基因编辑现象,CD81基因的敲除效率为27.9%。
 
CRISPR/Cas9慢病毒系统
 
图2. 以可诱导的方式编辑HEK293细胞中AAVS1基因
通过qRT-PCR分析6个Tet-On 3G-Cas9-阳性HEK293稳定细胞系中Cas9的诱导表达情况。将HEK293细胞分别接种至2个孔(12孔板),以AAVS1-sgRNA慢病毒(MOI=5)进行转导。转导8小时后,添加0.5 μg/ml强力霉素至其中一孔诱导培养6天。6天后采用Guide-it Mutation Detection Kit (Code No. 631443)检测AAVS1基因编辑效率。图A.通过qRT-PCR方法检测每个细胞克隆分别在未经诱导(-Dox)和经过诱导(+Dox)的情况下Cas9蛋白质的表达情况。未经诱导和经过诱导的细胞的Ct值和ΔCt值标注在相对应一栏,计算出来的表达倍数差异标注在右侧一栏。多个细胞克隆的检测结果显示,在所检测的细胞克隆中1号克隆(绿色数字)具有最好的诱导性能,只有3号克隆(红色数字)在没有强力霉素诱导的情况下Cas9也会有所表达而且诱导性能较差。图B. Guide-it解离酶分析实验检测未经诱导(–)和经过诱导(+)的细胞克隆中AAVS1基因编辑效率。亲本细胞(未转导细胞)检测结果显示未经诱导和经过诱导的细胞所产生的片段大小是等同的。而经过诱导的稳转细胞系的检测结果显示产生了较小的基因片段,这说明在所检测的细胞克隆中都发生了AAVS1基因编辑现象。3号克隆在未经诱导的情况下也可以观察到剪切产物,这一点与qRT-PCR检测结果是相一致的。
 
CRISPR/Cas9慢病毒系统
 
图3. Lenti-X Tet-On 3G CRISPR/Cas9系统载体组成
pLVX-EF1a-Tet3G载体编码表达Tet-On 3G转录激活蛋白质,由组成型启动子EF-1 alpha启动表达。与常用的CMV启动子相比,EF-1 alpha启动子在某些细胞类型(包括各种干细胞类型)中不易被沉默,所建立的诱导细胞系适用于长期使用。Tet-On 3G是由Tet-On Advanced转录激活蛋白质修饰而来,具有更高的强力霉素反应灵敏度。pLVX-TRE3G-Cas9-puro载体由诱导型启动子PTRE3GV启动表达经过优化的Cas9核酸酶。pLVX-TRE3G-Cas9-puro载体上的Cas9序列来源于杆菌属酿脓链球菌,进行了密码子优化以适用于哺乳动物细胞表达,另外在Cas9序列C端还引入了核定位信号(NLS)。pLVX-hyg-sgRNA1载体由组成型人U6启动子编码表达sgRNA(由用户设计并插入)。
 
CRISPR/Cas9慢病毒系统
 
图4.为可诱导型基因编辑选择优质的细胞克隆
通过分析Cas9表达情况或者分析未诱导的或者经过诱导的细胞群基因编辑情况来筛选优质的细胞克隆。虽然通过Western blot检测Cas9蛋白质表达情况有助于预筛选细胞克隆,但是CRISPR/Cas9介导的基因编辑是非常高效的,即使在通过Western blot检测不到Cas9蛋白质表达的情况下,在相应的细胞克隆中仍然有可能发生基因编辑现象。我们建议通过qRT-PCR方法来筛选Cas9背景表达量较低的细胞克隆,以避免在没有添加强力霉素的情况下发生基因编辑现象。图4上面一行显示的是优质细胞克隆(C-1)的检测数据,经过诱导的C-1细胞中Cas9蛋白质表达情况良好(Western blot,+),Cas9 mRNA背景表达水平非常低(qRT-PCR)。和未经诱导的细胞(-或者-Dox)相比,经过诱导的细胞(+或者+Dox)中Cas9的诱导表达使得基因编辑发生的频率更高,解离酶分析实验中小片段(蓝色箭头)的出现,FACS检测结果显示较大比例的细胞出现在“knockout”范围而未经诱导的细胞中基因编辑水平非常低都可以证实这一点。图4下面一行显示的是非优质细胞克隆(C-3)的检测数据,在未经诱导的细胞克隆(-)中即使通过Western blot没有检测到Cas9蛋白质的表达,但依然可以检测到Cas9 mRNA的表达(qRT-PCR)和基因编辑现象(解离酶,FACS)。
 
CRISPR/Cas9慢病毒系统
 
图5. LVX-hyg-CD81-sgRNA转导Jurkat或者HT1080细胞后采用潮霉素筛选稳定整合细胞系。之后采用LVX-puro-Cas9转导筛选获得的稳定细胞克隆,并采用嘌呤霉素再次进行筛选,通过FACS方法检测CD81敲除效率。以抗CD81抗体处理的未经Cas9转导的亲代细胞作为阳性对照,而未做抗体处理的亲代细胞作为阴性对照。
 
CRISPR/Cas9慢病毒系统
 
图6. 诱导敲除Jurkat细胞中CD81基因
按照实验手册操作流程建立Cas9背景表达较低的Tet-On 3G-Cas9-阳性Jurkat细胞,并以CD81-sgRNA慢病毒(MOI=5)连续转导两次。将成功转导的细胞接种至2个孔(12孔板)中并在其中一孔中添加0.5 μg/ml强力霉素(+Dox)诱导培养7天。采用FITC抗人CD81抗体进行检测并通过FACS进行分析,分析结果显示在未经强力霉素诱导的细胞(-Dox; top)中只有一小部分的细胞(0.4%)发生了基因编辑现象,而经过强力霉素诱导的细胞(+Dox; bottom)中发生CD81基因编辑的比例为32%。
 
■ 产品组份
Lenti-X CRISPR/Cas9 System (Code No.632629)
· pLVX-hyg-sgRNA1 Vector (Linear) (Code No. 632632,不单独销售)
· pLVX-puro-Cas9 Vector(Code No. 632631)
· Stellar Competent Cells(Code No. 636763)
· Guide-it Ligation Components v2 (Code No. 632615,不单独销售)
· Lenti-X Packaging Single Shots(Code No. 631275,不单独销售)

Lenti-X Tet-On 3G CRISPR/Cas9 System (Code No. 632633)
· pLVX-hyg-sgRNA1 Vector (Linear)
· pLVX-TRE3G-Cas9-puro Vector Set
· pLVX-EF1a-Tet3G Vector
· Stellar Competent Cells
· Guide-it Ligation Components v2
· Lenti-X Packaging Single Shots

pLVX-hyg-sgRNA1 Vector System (Code No. 632630)
· pLVX-hyg-sgRNA1 Vector (Linear) (Code No. 632632,不单独销售)
· Guide-it Ligation Components v2 (Code No. 632615,不单独销售)
· Stellar Competent Cells(Code No. 636763)

 
 
产品详情请点击:CRISPR/Cas9慢病毒系统
 

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